CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO
“LIC. JULIAN DIAZ ARIAS “
SUBMODULO II VOLUMETRÍA Y COMPLEJOMETRIA
TÉCNICO LABORATORISTA QUÍMICO
ALUMNOS:
AVILA PUNTOS MIRIAM DENISSE
JARDON CASTAÑEDA JOSSELYN
MEJIA RODRIGUEZ DANIEL
POLO CAYETANO BLANCA ESTHELA
SANCHEZ GONZALES JESSICA PAOLA
SANCHEZ TAPIA YENITZIA MARIANA
TARANGO MONDRAGON IZTEL DOLORES
PRACTICA: DETERMINACIÓN DE ALCALINIDAD EN MUESTRAS DE AGUA
PROFESORA: BEATRIZ LARRAURI RANGEL
4º SEMESTRE
INTRODUCCIÓN
La alcalinidad en el agua tanto natural como tratada, usualmente es causada por la presencia de iones carbonatos (CO3= ) y bicarbonatos ( HCO3- ), asociados con los cationes Na+, K+ Ca+2 y Mg+2 .
La alcalinidad se determina por titulación de la muestra con una solución valorada de un ácido fuerte como el HCl, mediante dos puntos sucesivos de equivalencia, indicados ya sea por medios potencio métricos o por medio del cambio de color utilizando dos indicadores ácido-base adecuado.
Almacenaje de la muestra. La muestra de deberá analizar de inmediato. Los resultados de muestras almacenadas no son representativos.
Campo de aplicación Este método, es aplicable para la determinación de la alcalinidad de carbonatos y bicarbonatos, en aguas naturales, domésticas, industriales y residuales.
La medición de la alcalinidad, sirve para fijar los parámetros del tratamiento químico del agua, así como ayudarnos al control de la corrosión y la incrustación en los sistemas que utilizan agua como materia prima o en su proceso.
Principios. En este método, la alcalinidad se determina por titulación de la muestra con una solución valorada de un ácido fuerte como el HCl, mediante dos puntos sucesivos de equivalencia, indicados por medio del cambio de color de dos indicadores ácido-base adecuado. CO3-HCO3 y HCO3-H2CO3
Cuando se le agrega a la muestra de agua indicador de fenolftaleína y aparece un color rosa, esto indica que la muestra tiene un pH mayor que 8.3 y es indicativo de la presencia de carbonatos.
Se procede a titular con HCl valorado, hasta que el color rosa vire a incoloro, con esto se titula la mitad del CO3=.
En enseguida se agregan unas gotas de indicador de azul.
MATERIAL
• SOPORTE
• BURETA
• 2 MATRAZ ELERMEYER
• 2 VASOS DE PRESIPITADO
• PINZAS PARA BURETA
• NUEZ
• 2 PIPETAS
• AJITADOR
• PERILLA
• BALANZA GRANATARIA
• ESPATULA
• PIZETA
DESCRIPCION
Entramos al laboratorio pedimos el material para la práctica de determinación de alcalinidad en muestras de agua.
Teníamos que valorar al acido titulándolo con la solución de anaranjado de metileno lo cual realizamos las sig. Formulas
Ni=10xdxp=10x1.185x37.2=12.07k
p.q 36.5
Vi=NixVf= (0.1N) (100ML) = 10 ML = 0.8 ML
Ni 12.07 N 12.07
Valorando con carbonato de sodio NaCO3=46+12+48=106/2= .53
Titulando hasta llegar a un color canela
Nf= 0-1N X 11 = 0.11
10
Determinando alcalinidad = 25ml
1) 25ml (en bureta)= acido 10ml de muestra (agua) Vg=13.1ml alcalinidad= 13.1x0.11x 50000 = 7205 ppm
10ml
2) Vi = 25 ml 10ml de muestra (agua) Vg = 13.1 ml alcalinidad= 13.1x0.11x 50000 = 7205 ppm
10ml
3) Vi = 20 ml 10ml de muestra (agua) Vg = 13 ml alcalinidad= 13x0.11x 50000 = 7150 ppm
10ml
Estos fueron los resultados de los tres procedimientos de las titulaciones
Esta es la medición del pH
COMENTARIOS
ITZEL: la práctica fue interesante e importante puesto que en eta ocasión aprendimos algo y realizamos correctamente la práctica.
JOSSELYN: la práctica fue interesante y se hizo lo que se fue indicando para que todo saliera conforme a los cálculos que se realizaron.
MIRIAM: esta práctica fue interesante y aprendimos mucho ya que se realizo la practica conforme debía ser y fue correcta.
YENITZIA: fue interesante ya que al realizar la practica a como se debía salieron los resultados correctos.
JESICA: la práctica fue importante ya que aprendimos algo nuevo y realizamos la práctica correctamente.
DANIEL: fue interesante porque se realizo bien, también fue importante y aprendimos.
BLANCA: al realizar la practica la debimos de realizar conforme en orden y lavando los materiales ya que si quedan residuos de algún otro material ya no podemos esperar a que salga bien y que los pesos sean los correctos pues de otra forma no servirían.
CONCLUSIONES
ITZEL: la muestra de agua analizada resulto con una misma alcalinidad para las tres muestras preparadas y realizadas y la muestra resulto correcta sin variaciones.
Yo hice: los cálculos y prepare el carbonato de calcio
MIRIAM: fue similar la alcalinidad que resulto de la muestra del agua para las tres preparaciones y fue lo mismo en todas.
Yo hice: fui por material, valencie, ayude a pipetear y fui a dejar material
JESSICA: las muestras tuvieron la misma alcalinidad y al hacer los cálculos fueron los correctos.
Yo hice: titulación, anotar cálculos y dejar el material
JOSSELYN: se realizo bien la practica ya que en las tres soluciones dio lo mismo ya que se hizo correctamente.
Yo hice: el vale, fui por material y lave el material
DANIEL: las muestras tuvieron una misma alcalinidad para las tres muestras lo cual fue correcto.
Yo hice: fui por material, reactivos, ayude a pipetear y fui a dejar material
YENITZIA: la alcalinidad en las tres soluciones fue la misma ya que se realizo bien conforme al procedimiento.
Yo hice: lave material y ayude a los demás
BLANCA: nos pudimos dar cuenta que las preparaciones fueron correctas y bien hechas pues la alcalinidad de las tres soluciones fueron las misma aunque en la tercera fue un poco variada.
Yo hice: repartí material, lave material, pipetie, titule y recogí el material
26 may 2011
18 may 2011
VALORACION DE AgNO3
Material:
1 bureta
1 soporte
1 pinzas por bureta con mariposa
3 pipetas
3 matraz erlen Meyer
3 matraz aforado
3 vasos de precipitado
1 balanza
1 espátula
1 piceta
1 agitador
1 perilla
SUSTANCIAS:
AgNO3
NaCl
KCrO4
FORMULAS:
NaCl=23+35.5=58.5 AgNO3=108+14+48=170
Gs= N X PEQ X V (litros) Gs= N X PEQ X V (litros)
=0.05 X 58.5 X 0.1 = 0.3 = 0.05 X 170 X 0.1 = 0.85
DESARROLLO:
Se vacía 0.3 g. de NaCl en 100ml de agua destilada.
Se pesan 0.85 g. de AgNO3 y se le agregan a 100ml de agua destilada igualmente a lo anterior.
Se agrega el titulador que es NaCl en una bureta de 25ml.
De AgNO3 se miden 10ml con una pipeta y se vacía a un matraz erlen Meyer agregándosele 1ml de KCrO4 con una pipeta de 1ml y se agrega gota a gota el titúlante NaCl con el agua destilada que ya tenía.
1.-se gastó 9ml al hacerse amarillo y para las bolitas blancas se gastó 1ml mas y en total fueron 10ml gastados
Material:
1 bureta
1 soporte
1 pinzas por bureta con mariposa
3 pipetas
3 matraz erlen Meyer
3 matraz aforado
3 vasos de precipitado
1 balanza
1 espátula
1 piceta
1 agitador
1 perilla
SUSTANCIAS:
AgNO3
NaCl
KCrO4
FORMULAS:
NaCl=23+35.5=58.5 AgNO3=108+14+48=170
Gs= N X PEQ X V (litros) Gs= N X PEQ X V (litros)
=0.05 X 58.5 X 0.1 = 0.3 = 0.05 X 170 X 0.1 = 0.85
DESARROLLO:
Se vacía 0.3 g. de NaCl en 100ml de agua destilada.
Se pesan 0.85 g. de AgNO3 y se le agregan a 100ml de agua destilada igualmente a lo anterior.
Se agrega el titulador que es NaCl en una bureta de 25ml.
De AgNO3 se miden 10ml con una pipeta y se vacía a un matraz erlen Meyer agregándosele 1ml de KCrO4 con una pipeta de 1ml y se agrega gota a gota el titúlante NaCl con el agua destilada que ya tenía.
1.-se gastó 9ml al hacerse amarillo y para las bolitas blancas se gastó 1ml mas y en total fueron 10ml gastados
17 may 2011
observamiento de celulas de leche de bulgaros
CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO
LICENCIADO JULIAN DIAZ ARIAS
SUBMODULO 3: PRACTICA Y APLICA ANÁLISIS MICROBIOLÓGICOS EN AGUAS, ALIMENTOS Y VINOS.
PRACTICA: OBSERVACIÓN DE LEVADURA Y BULGAROS DE LECHE
PROFESORA: BEATRIZ LARRAURI RANGEL
INTEGRANTES:
AVILA PUNTOS MIRIAM DENISSE
JARDÓN CASTAÑEDA JOSSELYN
MEJÍA DÍAZ DANIEL
POLO CAYETANO BLANCA ESTHELA
SÁNCHEZ GONZÁLEZ JESSICA PAOLA
SÁNCHEZ TAPIA YENITZIA MARIANA
TARANGO MONDRAGON ITZEL DOLORES
TÉCNICO LABORATORISTA QUÍMICO
GRADO: 2°
GRUPO: 3
CUARTO SEMESTRE
INTRODUCCION:
La levadura son hongos con capacidad para realizar la fermentación de los hidratos de carbono; la más utilizada es la levadura de cerveza. A la levadura se le da diferentes usos, en gastronomía se utiliza desde la antigüedad en la elaboración de distintos alimentos, como el pan, el vino o la cerveza. La levadura se aplica para que las preparaciones aumenten su tamaño producto de la fermentación, en el supermercado se presenta diversas formas: fresca o de panadero, desecada o en polvo.
Una gran cantidad de estudios evidencian los beneficios de las leches fermentadas mediante bacterias de origen intestinal también llamados probióticos. La industria alimentaria ha aprovechado sus cualidades, para llegar hasta el consumidor ofreciendo diversas presentaciones y modalidades, como leches bajas en lactosa, grasas y calorías, lácteos en forma de quesos (cottage), tabletas, polvos y supositorios.
El grupo de los probióticos se inscribe entre los llamados “alimentos funcionales”, los cuales disminuyen el riesgo de contraer enfermedades porque los cultivos microbianos vivos actúan como reguladores biológicos que mantienen estable y equilibrada la flora intestinal, lo cual garantiza la salud al evitar la colonización y el desarrollo excesivo de microorganismos causantes de enfermedades. Para ello se valen de diversos mecanismos, como la competencia y la síntesis de bacteriocitas y bacteriófagos.
Un requisito que debe cubrir un microorganismo prebiótico para garantizar su efecto benéfico en el organismo es permanecer viable y activo tanto en el alimento como durante su paso por el aparato digestivo.
Las cepas que más utiliza esa industria son: L. casei, L. acidophilus, Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium breve, Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium longum, Leuconostoc, enterococos, propionibacterias y levaduras.
MATERIAL:
1 microscopio
3 porta objetos
3 cubre objetos
1 mechero bunsen
1 soporte
1 anillo metálico
2 vasos de precipitado
1 rejilla de asbesto
1 espátula
1 balanza
1 agitador
1 pizeta
1 mortero
2 pipetas
REACTIVOS:
Azul algodón
Azul de metileno
Búlgaros de leche
Azúcar
Levadura
DESARROLLO:
En un portaobjetos de puso una gota de la leche de los búlgaros y se flameo con el mechero.
Se tiño con azul de metileno, se coloco el cubreobjetos y después se observo al microscopio.
Se observo si había movimiento celular pero no lo hubo.
Después de preparo otra muestra y en esta ocasión se le agrego una poco de azúcar (0.5 gramos de azúcar diluidos en 2 mililitros de agua destilada) se le coloco el cubreobjetos y se observo al micros copio. En esta ocasión pudimos percibir los movimientos que tenían las células.
Después se pusieron a calentar algunos gramos de levadura en 10 mililitros de agua, ya que estaba caliente se retiro del mechero y se dejo enfriar un poco.
Ya que estaba fría la levadura se coloco una gota en el portaobjetos,
CONCLUSIÓN: los microorganismos de la leche de los búlgaros tienen un mayor movimiento con la aplicación de azúcar puesto que esta misma es el alimento de esos microorganismos, y pudimos apreciar como se movían más rápido hacia donde estaba concentrada mas el azúcar.
LO QUE HIZO CADA UNO:
MIRIAM: lavo material, ayudo y entrego material.
JOSSELYN: pidió material y ayudo.
BLANCA: preparo la solución de levadura, e hizo el frotis de la misma.
DANIEL: preparo un frotis o una muestra de una de búlgaros.
JESSICA: lavo material y estuvo ayudando a todos.
YENITZIA: preparo una muestra de la leche de búlgaros con azúcar para observarla.
ITZEL: preparo la solución de azúcar y estaba observando y enfocando el microscopio.
LICENCIADO JULIAN DIAZ ARIAS
SUBMODULO 3: PRACTICA Y APLICA ANÁLISIS MICROBIOLÓGICOS EN AGUAS, ALIMENTOS Y VINOS.
PRACTICA: OBSERVACIÓN DE LEVADURA Y BULGAROS DE LECHE
PROFESORA: BEATRIZ LARRAURI RANGEL
INTEGRANTES:
AVILA PUNTOS MIRIAM DENISSE
JARDÓN CASTAÑEDA JOSSELYN
MEJÍA DÍAZ DANIEL
POLO CAYETANO BLANCA ESTHELA
SÁNCHEZ GONZÁLEZ JESSICA PAOLA
SÁNCHEZ TAPIA YENITZIA MARIANA
TARANGO MONDRAGON ITZEL DOLORES
TÉCNICO LABORATORISTA QUÍMICO
GRADO: 2°
GRUPO: 3
CUARTO SEMESTRE
INTRODUCCION:
La levadura son hongos con capacidad para realizar la fermentación de los hidratos de carbono; la más utilizada es la levadura de cerveza. A la levadura se le da diferentes usos, en gastronomía se utiliza desde la antigüedad en la elaboración de distintos alimentos, como el pan, el vino o la cerveza. La levadura se aplica para que las preparaciones aumenten su tamaño producto de la fermentación, en el supermercado se presenta diversas formas: fresca o de panadero, desecada o en polvo.
Una gran cantidad de estudios evidencian los beneficios de las leches fermentadas mediante bacterias de origen intestinal también llamados probióticos. La industria alimentaria ha aprovechado sus cualidades, para llegar hasta el consumidor ofreciendo diversas presentaciones y modalidades, como leches bajas en lactosa, grasas y calorías, lácteos en forma de quesos (cottage), tabletas, polvos y supositorios.
El grupo de los probióticos se inscribe entre los llamados “alimentos funcionales”, los cuales disminuyen el riesgo de contraer enfermedades porque los cultivos microbianos vivos actúan como reguladores biológicos que mantienen estable y equilibrada la flora intestinal, lo cual garantiza la salud al evitar la colonización y el desarrollo excesivo de microorganismos causantes de enfermedades. Para ello se valen de diversos mecanismos, como la competencia y la síntesis de bacteriocitas y bacteriófagos.
Un requisito que debe cubrir un microorganismo prebiótico para garantizar su efecto benéfico en el organismo es permanecer viable y activo tanto en el alimento como durante su paso por el aparato digestivo.
Las cepas que más utiliza esa industria son: L. casei, L. acidophilus, Bifidobacterium bifidum, Bifidobacterium breve, Bifidobacterium infantis, Bifidobacterium longum, Leuconostoc, enterococos, propionibacterias y levaduras.
MATERIAL:
1 microscopio
3 porta objetos
3 cubre objetos
1 mechero bunsen
1 soporte
1 anillo metálico
2 vasos de precipitado
1 rejilla de asbesto
1 espátula
1 balanza
1 agitador
1 pizeta
1 mortero
2 pipetas
REACTIVOS:
Azul algodón
Azul de metileno
Búlgaros de leche
Azúcar
Levadura
DESARROLLO:
En un portaobjetos de puso una gota de la leche de los búlgaros y se flameo con el mechero.
Se tiño con azul de metileno, se coloco el cubreobjetos y después se observo al microscopio.
Se observo si había movimiento celular pero no lo hubo.
Después de preparo otra muestra y en esta ocasión se le agrego una poco de azúcar (0.5 gramos de azúcar diluidos en 2 mililitros de agua destilada) se le coloco el cubreobjetos y se observo al micros copio. En esta ocasión pudimos percibir los movimientos que tenían las células.
Después se pusieron a calentar algunos gramos de levadura en 10 mililitros de agua, ya que estaba caliente se retiro del mechero y se dejo enfriar un poco.
Ya que estaba fría la levadura se coloco una gota en el portaobjetos,
CONCLUSIÓN: los microorganismos de la leche de los búlgaros tienen un mayor movimiento con la aplicación de azúcar puesto que esta misma es el alimento de esos microorganismos, y pudimos apreciar como se movían más rápido hacia donde estaba concentrada mas el azúcar.
LO QUE HIZO CADA UNO:
MIRIAM: lavo material, ayudo y entrego material.
JOSSELYN: pidió material y ayudo.
BLANCA: preparo la solución de levadura, e hizo el frotis de la misma.
DANIEL: preparo un frotis o una muestra de una de búlgaros.
JESSICA: lavo material y estuvo ayudando a todos.
YENITZIA: preparo una muestra de la leche de búlgaros con azúcar para observarla.
ITZEL: preparo la solución de azúcar y estaba observando y enfocando el microscopio.
3 abr 2011
preparacion de colorantes
Centro de bachillerato tecnológico
“Lic. Julián Díaz Arias”
Integrantes:
Miriam Denisse Avila puntos
Josselyn jardon Castañeda
Daniel Mejía Rodríguez
Yenitzia mariana
Jessica Paola Sánchez Gonzales
Técnico laboratorista químico
Practica
Profra: Beatriz Larrauri Rangel
Grado: 2º grupo: “3”
4º semestre
INTRODUCCION
Acido-Alcohol: (decolorante para tinción Ziehl-Neelsen)
Ácido clorhídrico concentrado ..........................................................3 ml
Etanol 95% ....................................................................................97 ml
Azul de metileno: Colorante de contraste para tinción de flagelos.
Azul de metileno................................................................................1 g
Agua destilada...............................................................................100 ml
Azul de metileno de Loeffler: Tinciones simples.
Solución de hidróxido potásico al 1%.................................................1 ml
Azul de metileno, sol. saturada en etanol al 95%...............................30 ml
Agua destilada...............................................................................100 ml
Colorante para esporas:
Solución acuosa saturada de verde malaquita
Colorante para flagelos de Leifson:
Solución A
Fucsina básica .........................................................................1,2 g
Etanol 95%.............................................................................100 ml
Solución B
Ácido tánico................................................................................3 g
Agua destilada.........................................................................100 ml
Solución C
Cloruro sódico..........................................................................1,5 g
Agua destilada.........................................................................100 ml
Para preparar la solución de uso, se mezclan cantidades iguales de las soluciones A, B y C y se guarda en frasco cerrado herméticamente en la nevera donde es estable durante varias semanas.
Cristal violeta: Para tinción Gram y tinción simple.
Cristal violeta (violeta de genciana)....................................................0,5 g
Agua destilada.................................................................................100 ml
Lactofenol: Para preparaciones microscópicas en fresco de mohos.
Ácido láctico.....................................................................................100 ml
Fenol................................................................................................100 g
Glicerol.............................................................................................200 ml
Agua.................................................................................................100 ml
Lactofenol al Azul Algodón: Para preparaciones en fresco y tinciones de mohos.
Solución de azul algodón
Sol. saturada de azul algodón (azul anilina soluble)......................10 ml
Glicerol.....................................................................................10 ml
Agua.........................................................................................80 ml
Mezclar esta solución con lactofenol a partes iguales
Lugol: Solución de yodo para tinción Gram.
Yodo...................................................................................................1 g
Yoduro potásico..................................................................................2 g
Agua destilada.................................................................................300 ml
Safranina: Colorante de contraste para tinción Gram (preferible a la fucsina) y esporas.
Safranina.........................................................................................0,25 g
Agua destilada..................................................................................100 m
Material
· pipetas
· balanza
· vasos de precipitado
· goteros
· perilla
· colorante
Reactivos
Ácido clorhídrico
Etanol
Azul de metileno
Agua destilada
Hidróxido de potasio
Verde malaquita
Cristal violeta
Azul anilina
Glicerol
Agua
Safranina
Desarrollo
PARA EL ÁCIDO ALCOHOL
Se colocó en el vaso de precipitado 0.6 ml. De ácido clorhídrico y 19.4 ml de etanol 95%
PARA EL AZUL DE METILENO
0.2 ml de azul de metileno y 20 ml de agua destilada. Sirve la tinción de flagelos
PARA EL AZUL DE METILENO DE LOEFFLER
Se agregó 0.2 ml de solución de hidróxido potásico al 1%, azul de metileno 6ml y 20 ml de agua destilada. Estas son para las tinciones simples
COLORANTE PARA ESPORAS
Se utilizaron 0.2 g de verde malaquita y 19.8 ml de agua
PARA EL CRISTAL VIOLETA
2.5 g. de cristal violeta y 50 ml de agua destilada. Son mejores para la tinción de Gram y la tinción simple.
LACTOFENOL AL AZUL ALGODÓN
Se agregó azul anilina soluble 5 ml después es glicerol 5 ml y por ultimo 40 ml de agua se mezcló la solución con lactofenol a partes iguales. Para la tinción de mohos
PARA LA SAFRANINA
Se agregaron .05 g. de safranina y 20 ml de agua destilada para tinción preferible a la fucsina y esporas.
Conclusión
La conclusión a la que llego el equipo es que fue una buena práctica de la cual aprendimos algo nuevo como por ejemplo a hacer colorantes para que las tinciones sean más fáciles y específicas y cuando podemos usar otros reactivos si no contamos con los que se necesitan.
Lo que hizo el equipo
Miriam:
Paso material peso y ayudo
Josselyn:
Lavo material y ayudo
Jessica:
Paso y lavo material
Yenitzia:
Peso revolvió y paso l material
Itzel:
Peso y preparo las soluciones
Daniel:
Lavo material paso y dejo
“Lic. Julián Díaz Arias”
Integrantes:
Miriam Denisse Avila puntos
Josselyn jardon Castañeda
Daniel Mejía Rodríguez
Yenitzia mariana
Jessica Paola Sánchez Gonzales
Técnico laboratorista químico
Practica
Profra: Beatriz Larrauri Rangel
Grado: 2º grupo: “3”
4º semestre
INTRODUCCION
Acido-Alcohol: (decolorante para tinción Ziehl-Neelsen)
Ácido clorhídrico concentrado ..........................................................3 ml
Etanol 95% ....................................................................................97 ml
Azul de metileno: Colorante de contraste para tinción de flagelos.
Azul de metileno................................................................................1 g
Agua destilada...............................................................................100 ml
Azul de metileno de Loeffler: Tinciones simples.
Solución de hidróxido potásico al 1%.................................................1 ml
Azul de metileno, sol. saturada en etanol al 95%...............................30 ml
Agua destilada...............................................................................100 ml
Colorante para esporas:
Solución acuosa saturada de verde malaquita
Colorante para flagelos de Leifson:
Solución A
Fucsina básica .........................................................................1,2 g
Etanol 95%.............................................................................100 ml
Solución B
Ácido tánico................................................................................3 g
Agua destilada.........................................................................100 ml
Solución C
Cloruro sódico..........................................................................1,5 g
Agua destilada.........................................................................100 ml
Para preparar la solución de uso, se mezclan cantidades iguales de las soluciones A, B y C y se guarda en frasco cerrado herméticamente en la nevera donde es estable durante varias semanas.
Cristal violeta: Para tinción Gram y tinción simple.
Cristal violeta (violeta de genciana)....................................................0,5 g
Agua destilada.................................................................................100 ml
Lactofenol: Para preparaciones microscópicas en fresco de mohos.
Ácido láctico.....................................................................................100 ml
Fenol................................................................................................100 g
Glicerol.............................................................................................200 ml
Agua.................................................................................................100 ml
Lactofenol al Azul Algodón: Para preparaciones en fresco y tinciones de mohos.
Solución de azul algodón
Sol. saturada de azul algodón (azul anilina soluble)......................10 ml
Glicerol.....................................................................................10 ml
Agua.........................................................................................80 ml
Mezclar esta solución con lactofenol a partes iguales
Lugol: Solución de yodo para tinción Gram.
Yodo...................................................................................................1 g
Yoduro potásico..................................................................................2 g
Agua destilada.................................................................................300 ml
Safranina: Colorante de contraste para tinción Gram (preferible a la fucsina) y esporas.
Safranina.........................................................................................0,25 g
Agua destilada..................................................................................100 m
Material
· pipetas
· balanza
· vasos de precipitado
· goteros
· perilla
· colorante
Reactivos
Ácido clorhídrico
Etanol
Azul de metileno
Agua destilada
Hidróxido de potasio
Verde malaquita
Cristal violeta
Azul anilina
Glicerol
Agua
Safranina
Desarrollo
PARA EL ÁCIDO ALCOHOL
Se colocó en el vaso de precipitado 0.6 ml. De ácido clorhídrico y 19.4 ml de etanol 95%
PARA EL AZUL DE METILENO
0.2 ml de azul de metileno y 20 ml de agua destilada. Sirve la tinción de flagelos
PARA EL AZUL DE METILENO DE LOEFFLER
Se agregó 0.2 ml de solución de hidróxido potásico al 1%, azul de metileno 6ml y 20 ml de agua destilada. Estas son para las tinciones simples
COLORANTE PARA ESPORAS
Se utilizaron 0.2 g de verde malaquita y 19.8 ml de agua
PARA EL CRISTAL VIOLETA
2.5 g. de cristal violeta y 50 ml de agua destilada. Son mejores para la tinción de Gram y la tinción simple.
LACTOFENOL AL AZUL ALGODÓN
Se agregó azul anilina soluble 5 ml después es glicerol 5 ml y por ultimo 40 ml de agua se mezcló la solución con lactofenol a partes iguales. Para la tinción de mohos
PARA LA SAFRANINA
Se agregaron .05 g. de safranina y 20 ml de agua destilada para tinción preferible a la fucsina y esporas.
Conclusión
La conclusión a la que llego el equipo es que fue una buena práctica de la cual aprendimos algo nuevo como por ejemplo a hacer colorantes para que las tinciones sean más fáciles y específicas y cuando podemos usar otros reactivos si no contamos con los que se necesitan.
Lo que hizo el equipo
Miriam:
Paso material peso y ayudo
Josselyn:
Lavo material y ayudo
Jessica:
Paso y lavo material
Yenitzia:
Peso revolvió y paso l material
Itzel:
Peso y preparo las soluciones
Daniel:
Lavo material paso y dejo
2 abr 2011
OBSERVACIÓN DE LEVADURAS Y MOHO.
CENTRO DE BACHILLERATO TECNOLÓGICO
LICENCIADO JULIAN DIAZ ARIAS
SUBMODULO 3: PRACTICA Y APLICA ANÁLISIS MICROBIOLÓGICOS EN AGUAS, ALIMENTOS Y VINOS.
PRACTICA N° 4: OBSERVACIÓN DE LEVADURAS Y MOHO.
PROFESORA: BEATRIZ LARRAURI RANGEL
INTEGRANTES:
AVILA PUNTOS MIRIAM DENISSE
JARDÓN CASTAÑEDA JOSSELYN
MEJÍA DÍAZ DANIEL
POLO CAYETANO BLANCA ESTHELA
SÁNCHEZ GONZÁLEZ JESSICA PAOLA
SÁNCHEZ TAPIA YENITZIA MARIANA
TARANGO MONDRAGON ITZEL DOLORES
TÉCNICO LABORATORISTA QUÍMICO
GRADO: 2°
GRUPO: 3
CUARTO SEMESTRE
INTRODUCCIÓN:
LEVADURA: levadura es un hongo microscópico unicelular y diminuto que existe alrededor nuestro, en la tierra, en las plantas e incluso en el aire. Su uso es tan antiguo que suele ser llamada la planta más vieja cultivada por el hombre. Es importante por su capacidad para producir la fermentación de hidratos de carbono, generando distintas sustancias. Existen diferentes tipos de levadura, pero la mayoría de las levaduras que se cultivan pertenecen al género Saccharomyces. Las levaduras se han utilizado desde la prehistoria en la elaboración del pan y del vino. Las investigaciones arqueológicas indican que la cuna del pan moderno fue el Antiguo Egipto, dado que, excavaciones en ruinas, encontraron instrumentos para el procesamiento de la levadura y cámaras para cocinar pan, así como también dibujos de mas de 4 mil años de antigüedad de panaderías y cervecerías.
MOHO: El moho es un hongo que se encuentra tanto al aire libre como en interiores. Existen muchas especies de mohos que son especies microscópicas del reino fungí que crecen en formas de filamentos pluricelulares o unicelulares. Crecen mejor en condiciones cálidas y húmedas; se reproducen y propagan mediante esporas. Las esporas del moho pueden sobrevivir en variadas condiciones ambientales, incluso en extrema sequedad, si bien ésta no favorece su crecimiento normal. La penicilina (cuyo nombre deriva del hongo Penicillium) es un antibiótico. Fue descubierto por Alexander Fleming. Estos y otros mohos también crecen en el pan y en otros tipos de alimentos, haciéndolos incomestibles. En lo que concierne a los hongos, se pueden dar en cualquier tipo de condiciones climáticas pero deben de ser húmedas o cálidas no obstante, el pan que comemos también tiene ese tipo de hongos pero éstos son llamados levaduras.
MATERIAL:
1 microscopio
1 asa de inocular
5 porta objetos
5 cubre objetos
1 mechero bunsen
1 soporte
1 anillo metálico
2 vasos de precipitado
1 termómetro
1 rejilla de asbesto
1 espátula
1 balanza
1 agitador
1 pizeta
COLORANTES
Verde malaquita
Cristal violeta
Azul de metileno
DESARROLLO
1.- Poner a calentar agua a una temperatura de 36° a 37°c manteniéndola a esa temperatura.
2.- Agregar la levadura
3.- Colocar una gota de la levadura en el porta objetos y realizar tinción fija.
4.- Colocar una gota de agua destilada en el porta objetos y tomar una muestra de moho de tortilla.
5.- Realizar tinción fija.
6.- Para realizar la tinción se agregara una gota de agua destilada en el centro del porta objetos, se agregara el colorante, se retiraran restos del colorante y se pasara por el mechero, se le colocara el cubre objeto s.
7.- Se enfocara al microscopio para ser enfocado y así poder observar.
Lo que hizo cada uno:
Miriam: fue por material, tiño y lavo material
Josselyn: fue por material, preparo un colorante y saco fotos.
Daniel: entrego material, puso el agua con levadura, controlo la temperatura
Blanca: entrego material a los equipos
Jessica: entrego material, ayudo a preparar el colorante, lavo material.
Yenitzia: hizo el vale, tiño material
Itzel: ayudo a prepara la levadura y enfoco al microscopio.
LICENCIADO JULIAN DIAZ ARIAS
SUBMODULO 3: PRACTICA Y APLICA ANÁLISIS MICROBIOLÓGICOS EN AGUAS, ALIMENTOS Y VINOS.
PRACTICA N° 4: OBSERVACIÓN DE LEVADURAS Y MOHO.
PROFESORA: BEATRIZ LARRAURI RANGEL
INTEGRANTES:
AVILA PUNTOS MIRIAM DENISSE
JARDÓN CASTAÑEDA JOSSELYN
MEJÍA DÍAZ DANIEL
POLO CAYETANO BLANCA ESTHELA
SÁNCHEZ GONZÁLEZ JESSICA PAOLA
SÁNCHEZ TAPIA YENITZIA MARIANA
TARANGO MONDRAGON ITZEL DOLORES
TÉCNICO LABORATORISTA QUÍMICO
GRADO: 2°
GRUPO: 3
CUARTO SEMESTRE
INTRODUCCIÓN:
LEVADURA: levadura es un hongo microscópico unicelular y diminuto que existe alrededor nuestro, en la tierra, en las plantas e incluso en el aire. Su uso es tan antiguo que suele ser llamada la planta más vieja cultivada por el hombre. Es importante por su capacidad para producir la fermentación de hidratos de carbono, generando distintas sustancias. Existen diferentes tipos de levadura, pero la mayoría de las levaduras que se cultivan pertenecen al género Saccharomyces. Las levaduras se han utilizado desde la prehistoria en la elaboración del pan y del vino. Las investigaciones arqueológicas indican que la cuna del pan moderno fue el Antiguo Egipto, dado que, excavaciones en ruinas, encontraron instrumentos para el procesamiento de la levadura y cámaras para cocinar pan, así como también dibujos de mas de 4 mil años de antigüedad de panaderías y cervecerías.
MOHO: El moho es un hongo que se encuentra tanto al aire libre como en interiores. Existen muchas especies de mohos que son especies microscópicas del reino fungí que crecen en formas de filamentos pluricelulares o unicelulares. Crecen mejor en condiciones cálidas y húmedas; se reproducen y propagan mediante esporas. Las esporas del moho pueden sobrevivir en variadas condiciones ambientales, incluso en extrema sequedad, si bien ésta no favorece su crecimiento normal. La penicilina (cuyo nombre deriva del hongo Penicillium) es un antibiótico. Fue descubierto por Alexander Fleming. Estos y otros mohos también crecen en el pan y en otros tipos de alimentos, haciéndolos incomestibles. En lo que concierne a los hongos, se pueden dar en cualquier tipo de condiciones climáticas pero deben de ser húmedas o cálidas no obstante, el pan que comemos también tiene ese tipo de hongos pero éstos son llamados levaduras.
MATERIAL:
1 microscopio
1 asa de inocular
5 porta objetos
5 cubre objetos
1 mechero bunsen
1 soporte
1 anillo metálico
2 vasos de precipitado
1 termómetro
1 rejilla de asbesto
1 espátula
1 balanza
1 agitador
1 pizeta
COLORANTES
Verde malaquita
Cristal violeta
Azul de metileno
DESARROLLO
1.- Poner a calentar agua a una temperatura de 36° a 37°c manteniéndola a esa temperatura.
2.- Agregar la levadura
3.- Colocar una gota de la levadura en el porta objetos y realizar tinción fija.
4.- Colocar una gota de agua destilada en el porta objetos y tomar una muestra de moho de tortilla.
5.- Realizar tinción fija.
6.- Para realizar la tinción se agregara una gota de agua destilada en el centro del porta objetos, se agregara el colorante, se retiraran restos del colorante y se pasara por el mechero, se le colocara el cubre objeto s.
7.- Se enfocara al microscopio para ser enfocado y así poder observar.
Lo que hizo cada uno:
Miriam: fue por material, tiño y lavo material
Josselyn: fue por material, preparo un colorante y saco fotos.
Daniel: entrego material, puso el agua con levadura, controlo la temperatura
Blanca: entrego material a los equipos
Jessica: entrego material, ayudo a preparar el colorante, lavo material.
Yenitzia: hizo el vale, tiño material
Itzel: ayudo a prepara la levadura y enfoco al microscopio.
30 mar 2011
tincion de celulas vegetales
C. B. T.
"Lic. Julián Díaz Arias"
Chapultepec
materia: submodulo profesional III
practica de observacion de celulas vegetales
profesora: Beatriz Larrauri Rangel
equipo # 3
integrantes:
Avila Puntos Miriam Denisse
Jardon Castañeda Josselyn
Mejía Rodriguez Daniel
Sánchez González Jessica Paola
Sánchez Tapia Yenitzia
Tarango Mondragon Itzel Dolores
carrera: T. L. Q.
semestre: cuarto
grupo: "3"
fecha: 29 de marzo de 2011
INTRODUCCION
Células vegetales
Tanto las células de las plantas como las de los animales son eucarióticas (tienen un núcleo delimitado por una membrana), sin embargo presentan algunas diferencias:
• Las células vegetales presentan una pared celular celulósica, rígida que evita cambios de forma y posición.
• Las células vegetales contienen plastidios, estructuras rodeadas por una membrana, que sintetizan y almacenan alimentos. Los más comunes son los cloroplastos.
• Casi todas las células vegetales poseen vacuolas, que tienen la función de transportar y almacenar nutrientes, agua y productos de desecho.
• Las células vegetales complejas, carecen de ciertos organelos, como los centriolos y los lisosomas.
Las células vegetales, presentan un alto grado de organización, con numerosas estructuras internas delimitadas por membranas.
La membrana nuclear establece una barrera entre la cromatina (material genético) y el citoplasma.
Las mitocondrias, de interior sinuoso, convierten los nutrientes en energía que utiliza la planta.
A diferencia de la célula animal, la vegetal contiene cloroplastos, unos orgánulos capaces de sintetizar azúcares a partir de dióxido de carbono, agua y luz solar.
Otro rasgo diferenciador es la pared celular, formada por celulosa rígida, y la vacuola única y llena de líquido, muy grande en la célula vegetal.
La pared celular de las células vegetales es rígida, lo que determina las formas geométricas que encontramos en los tejidos vegetales, como el hexagonal observado en las células de la cubierta de las cebollas.
MATERIAL:
• 4 portaobjetos
• 4 cubreobjetos
• 1 microscopio
• goteros
• 1 cebolla
• 1 papa
COLORANTES:
• AZUL DE METILENO
• AZUL ALGODÓN
• Verde malaquita
• Safranina
• Cristal violeta
DESARROLLO:
1. En un portaobjetos de coloca una telita de cebolla.
2. Se tiñe con un colorante y después cada cebolla con cada uno.
3. Se enjuaga con un poco de agua.
4. Se le coloca el cubreobjetos.
5. Se observa al microscopio.
6. Se hace lo mismo con la papa.
CONCLUSION:
El equipo llego a la conclusión de que el mejor colorante para observar los núcleos de las células de la cebolla así como de la papa en el azul de metileno pues con este pudimos observar mejor el núcleo de las células de conformaban los vegetales.
LO QUE HIZO CADA UNO:
MIRIAM: tiño con safranina y lavo material.
JOSSELYN: tiño con cristal violeta y lavo material.
DANIEL: tiño con azul algodón y fue por material.
JESSICA: tiño con azul de metileno y preparo la safranina.
YENITZIA: tiño con verde malaquita y entrego material.
ITZEL: pidió material y enfoco todas las muestras.
"Lic. Julián Díaz Arias"
Chapultepec
materia: submodulo profesional III
practica de observacion de celulas vegetales
profesora: Beatriz Larrauri Rangel
equipo # 3
integrantes:
Avila Puntos Miriam Denisse
Jardon Castañeda Josselyn
Mejía Rodriguez Daniel
Sánchez González Jessica Paola
Sánchez Tapia Yenitzia
Tarango Mondragon Itzel Dolores
carrera: T. L. Q.
semestre: cuarto
grupo: "3"
fecha: 29 de marzo de 2011
INTRODUCCION
Células vegetales
Tanto las células de las plantas como las de los animales son eucarióticas (tienen un núcleo delimitado por una membrana), sin embargo presentan algunas diferencias:
• Las células vegetales presentan una pared celular celulósica, rígida que evita cambios de forma y posición.
• Las células vegetales contienen plastidios, estructuras rodeadas por una membrana, que sintetizan y almacenan alimentos. Los más comunes son los cloroplastos.
• Casi todas las células vegetales poseen vacuolas, que tienen la función de transportar y almacenar nutrientes, agua y productos de desecho.
• Las células vegetales complejas, carecen de ciertos organelos, como los centriolos y los lisosomas.
Las células vegetales, presentan un alto grado de organización, con numerosas estructuras internas delimitadas por membranas.
La membrana nuclear establece una barrera entre la cromatina (material genético) y el citoplasma.
Las mitocondrias, de interior sinuoso, convierten los nutrientes en energía que utiliza la planta.
A diferencia de la célula animal, la vegetal contiene cloroplastos, unos orgánulos capaces de sintetizar azúcares a partir de dióxido de carbono, agua y luz solar.
Otro rasgo diferenciador es la pared celular, formada por celulosa rígida, y la vacuola única y llena de líquido, muy grande en la célula vegetal.
La pared celular de las células vegetales es rígida, lo que determina las formas geométricas que encontramos en los tejidos vegetales, como el hexagonal observado en las células de la cubierta de las cebollas.
MATERIAL:
• 4 portaobjetos
• 4 cubreobjetos
• 1 microscopio
• goteros
• 1 cebolla
• 1 papa
COLORANTES:
• AZUL DE METILENO
• AZUL ALGODÓN
• Verde malaquita
• Safranina
• Cristal violeta
DESARROLLO:
1. En un portaobjetos de coloca una telita de cebolla.
2. Se tiñe con un colorante y después cada cebolla con cada uno.
3. Se enjuaga con un poco de agua.
4. Se le coloca el cubreobjetos.
5. Se observa al microscopio.
6. Se hace lo mismo con la papa.
CONCLUSION:
El equipo llego a la conclusión de que el mejor colorante para observar los núcleos de las células de la cebolla así como de la papa en el azul de metileno pues con este pudimos observar mejor el núcleo de las células de conformaban los vegetales.
LO QUE HIZO CADA UNO:
MIRIAM: tiño con safranina y lavo material.
JOSSELYN: tiño con cristal violeta y lavo material.
DANIEL: tiño con azul algodón y fue por material.
JESSICA: tiño con azul de metileno y preparo la safranina.
YENITZIA: tiño con verde malaquita y entrego material.
ITZEL: pidió material y enfoco todas las muestras.
29 mar 2011
valoración de hidróxido de sodio y Acido clorhídrico solución 0.1 normal
Centro de bachillerato tecnológico“licenciado Julián Díaz Arias”
Submodulo IIInterpreta y practica los fundamentos de volumetría y complejometria
Practica 1: valoración de hidróxido de sodio y Acido clorhídrico solución 0.1 normal
Alumnas: Jessica Paola Sánchez GonzálezItzel dolores Tarango MondragonJosselyn Jardon CastañedaMiriam Denisse Avila PuntosDaniel Mejía RodríguezYenitzia mariana Sánchez TapiaBALNCA ESTELA POLO CAYETANO
Profesora: Beatriz Larrauri Rangel
Técnico Laboratorista químico Grado: 2°Grupo: 3Semestre: 4°
Introducción•Aplicar los principios de neutralización que rigen las reacciones ácido - base.
•Preparar una solución patrón de HCL aproximadamente 0.1N y titularla para hallar su concentración exacta.
•Preparar una solución patrón de NaOH aproximadamente 0.1N y titularla para hallar su concentración exacta.
Para valorar el NaOH se procede de igual manera que para el HCl, se coloca en un Erlenmeyer la cantidad de patrón primario calculada y se lo disuelve aproximadamente con 100 ml de H 2Od , se le agregan 5 o 6 gotas del indicador fenolftaleína y desde la bureta se le va agregando gota a gota la solución de NaOH cuya concentración queremos determinar. Valoramos y cuando cambia de color se hierve para eliminar el CO 2que pueda haber (cambia de color), se enfría y se sigue valorando. Es ese el volumen que se considera como volumen final y se debe expresar con dos decimales.
Se repiten las valoraciones y se hace el promedio de las normalidades.
Material:[Image] 2 matraz volumétricos[Image] 1 soporte universal[Image] 1 pinza para bureta[Image] 2 matraz elermeyer[Image] 3 pinzas[Image] 1 balanza[Image] 1 espátula[Image] 2 vasos de precipitado[Image] 2 pesetas[Image] 1 agitadorSubstanciasv Acido clorhídrico (bicarbonato)v Hidróxido de sodio v Diplómato de potasiov Acido oxálicov Fenolftaleínav Anaranjado de metilov Agua
Desarrollo
1) En uno del matraz se le colocan 100 ml. De acido oxálico disuelto en agua y solo se toman 10 ml. De la solución2) En los 10ml. Colocar 3 gotas de fenolftaleína 3) En la bureta se le coloca el hidróxido de sodio disuelto en agua4) El hidróxido de sodio se deja caer gota a gota en el matraz.5) Se mueve constantemente el matraz cuando va cayendo la solución y observar el cambio de color6) Para el cambio de color se colocan 5 ml. De acido
Submodulo IIInterpreta y practica los fundamentos de volumetría y complejometria
Practica 1: valoración de hidróxido de sodio y Acido clorhídrico solución 0.1 normal
Alumnas: Jessica Paola Sánchez GonzálezItzel dolores Tarango MondragonJosselyn Jardon CastañedaMiriam Denisse Avila PuntosDaniel Mejía RodríguezYenitzia mariana Sánchez TapiaBALNCA ESTELA POLO CAYETANO
Profesora: Beatriz Larrauri Rangel
Técnico Laboratorista químico Grado: 2°Grupo: 3Semestre: 4°
Introducción•Aplicar los principios de neutralización que rigen las reacciones ácido - base.
•Preparar una solución patrón de HCL aproximadamente 0.1N y titularla para hallar su concentración exacta.
•Preparar una solución patrón de NaOH aproximadamente 0.1N y titularla para hallar su concentración exacta.
Para valorar el NaOH se procede de igual manera que para el HCl, se coloca en un Erlenmeyer la cantidad de patrón primario calculada y se lo disuelve aproximadamente con 100 ml de H 2Od , se le agregan 5 o 6 gotas del indicador fenolftaleína y desde la bureta se le va agregando gota a gota la solución de NaOH cuya concentración queremos determinar. Valoramos y cuando cambia de color se hierve para eliminar el CO 2que pueda haber (cambia de color), se enfría y se sigue valorando. Es ese el volumen que se considera como volumen final y se debe expresar con dos decimales.
Se repiten las valoraciones y se hace el promedio de las normalidades.
Material:[Image] 2 matraz volumétricos[Image] 1 soporte universal[Image] 1 pinza para bureta[Image] 2 matraz elermeyer[Image] 3 pinzas[Image] 1 balanza[Image] 1 espátula[Image] 2 vasos de precipitado[Image] 2 pesetas[Image] 1 agitadorSubstanciasv Acido clorhídrico (bicarbonato)v Hidróxido de sodio v Diplómato de potasiov Acido oxálicov Fenolftaleínav Anaranjado de metilov Agua
Desarrollo
1) En uno del matraz se le colocan 100 ml. De acido oxálico disuelto en agua y solo se toman 10 ml. De la solución2) En los 10ml. Colocar 3 gotas de fenolftaleína 3) En la bureta se le coloca el hidróxido de sodio disuelto en agua4) El hidróxido de sodio se deja caer gota a gota en el matraz.5) Se mueve constantemente el matraz cuando va cayendo la solución y observar el cambio de color6) Para el cambio de color se colocan 5 ml. De acido
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